靶向CD133的结合蛋白和应用

靶向cd133的结合蛋白和应用
1.本技术是申请号为“2019106722220”、发明名称为“靶向cd133的结合蛋白及其应用”的中国发明专利申请的分案申请。
技术领域
2.本发明涉及结合蛋白领域，特别涉及一种靶向cd133的结合蛋白和应用。


背景技术：

3.肿瘤细胞具有的不死性、迁移性和失去接触抑制的特点，使得肿瘤成为人类极难治愈的疾病之一。目前肿瘤治疗手段主要有手术切除，放疗或者化疗，但在肿瘤中的存在一群具有类似干细胞特性的肿瘤干细胞导致治疗后肿瘤复发率极高。2006年，美国癌症研究协会将肿瘤干细胞定义为：肿瘤中具有自我更新能力并能产生异质性肿瘤细胞的细胞。这种细胞在体内可以长期处于休眠状态，并具有多种耐药分子而对杀伤肿瘤细胞的外界理化因素不敏感，导致在常规肿瘤治疗方法消灭大部分普通肿瘤细胞后，肿瘤再次复发。基于肿瘤干细胞的特性，通过基因工程技术开发靶向肿瘤干细胞表面特异性标记分子的蛋白，或许将成为治疗癌症的新曙光。
4.作为干细胞及肿瘤干细胞表面特异性标记蛋白之一，cd133最早是yin等从cd34造血干细胞中通过人工ac133单克隆抗体分离而来。cdl33属于prominin家族成员之一，基因定于位于人的4号染色体，大小约152kb，包含至少37个外显子。cd133蛋白由865个氨基酸组成，分子量约120kda，包含：细胞外nh
2-端，5次跨膜结构域，2个胞外环状结构，2个富含半胱氨酸的胞内环状结构，胞内-cooh结构。已有研究表明，cd133是一种造血干细胞和神经干细胞的表面标志物；在脑胶质瘤、结肠癌、恶性黑色素瘤等肿瘤的肿瘤干细胞中cd133均有表达，并且在脑肿瘤、乳腺癌和结肠癌中，cd133

细胞比cd133-细胞成瘤性强；通过基因芯片和临床分析发现，cdl33

肿瘤细胞表现出更强的增殖能力，并且预后较差。以上研究结果均表明，cdl33在肿瘤干细胞中的表达对癌症的发展具有重要意义。因此，可将cd133作为开发抗肿瘤药物的新靶点。
5.与传统的单克隆抗体相比，仅由一个重链可变区组成的结合蛋白具有分子量小，易于穿过血脑屏障，免疫原性低，特异性强等优点。已有相关研究结果表明，结合蛋白可有效地靶向抗原，且在体内外均具有抗肿瘤效果。目前，还没有关于与肿瘤干细胞标记蛋白cd133结合的蛋白的研究。


技术实现要素：

6.本发明的主要目的在于克服现有技术的缺点与不足，提供一种靶向肿瘤干细胞标志分子cd133的结合蛋白。
7.本发明的另一目的在于提供上述的靶向cd133的结合蛋白的制备方法。
8.本发明的另一目的在于提供上述的靶向cd133的结合蛋白的应用。
9.本发明的目的通过下述技术方案实现：
一种靶向cd133的结合蛋白，是cd133-2c4蛋白；或是cd133-2b1蛋白、cd133-2c10蛋白、cd133-3b4蛋白、cd133-3b12蛋白、cd133-4b9蛋白和cd133-4b12蛋白中的至少一种与cd133-2c4蛋白组合形成的结合蛋白；所述的靶向cd133的结合蛋白由1个重链可变区组成；所述的cd133-2b1蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.1所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgykitaefmgwvrqapgkglewvstisrhsgstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycaasvgkfpwvwvseatvnywgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-2c4蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.2所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgfkfiseymgwvrqapgkglewvssitnadgstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycaavyvfpfgladevrywgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-2c10蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.3所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgdsispesmswvrqapgkglewvstidgpngstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycaarvrsavlglrlsanvsywgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-3b4蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.4所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgymlinqdmtwvrqapgkglewvsgildkdgstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycardvskwskdamsfwgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-3b12蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.5所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgvrinnqdmgwvrqapgkglewvsgirtgdgstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedaavyycagfvmwawevwsshpmwkpylrywgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-4b9蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.6所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgdsitsenmawvrqapgkglewvstikahngstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycathiamkgtwknwhpqslhywgqgtlvtvssaaa；所述的cd133-4b12蛋白的氨基酸序列如下（亦如seq id no.7所示）：maqvqllesggglvqpggslrlscaasgytispeamtwvrqapgkglewvstiymrdgstyyadsvkgrftisrdnskntlylqmnslraedtavyycarvgrgwsgwswnsnvkywgqgtlvtvssaaa。
10.编码所述的靶向cd133的结合蛋白的核苷酸序列，是编码所述的cd133-2c4蛋白的核苷酸序列；或是编码所述的cd133-2b1蛋白的核苷酸序列、编码所述的cd133-2c10蛋白的核苷酸序列、编码所述的cd133-3b4蛋白的核苷酸序列、编码所述的cd133-3b12蛋白的核苷酸序列、编码所述的cd133-4b9蛋白的核苷酸序列和编码所述的cd133-4b12蛋白的核苷酸序列中的至少一种与编码所述的cd133-2c4蛋白的核苷酸序列组合形成的核苷酸序列。
11.编码所述的cd133-2b1蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.8所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggatataagattaccgctgagtttatgggctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaaccatttcgaggcatagcggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcggcatctgtggggaagtttccgtgggtttgggtttcggaggccacggtcaactattggggtcagggaaccttggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-2c4蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.9所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggatttaagtttatctctgagtatatgggctgggtccgccaggctccagggaagggtctagag
tgggtatcaagcattactaacgcagacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcggcagtttatgtttttccgtttgggttggccgacgaggtcaggtattggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-2c10蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.10所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggagatagcattagccctgagtctatgagctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaaccattgatggcccaaacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcggcaagggttcgttctgcggttctgggtttgaggctgtccgcgaacgtgagctattggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-3b4蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.11所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggatatatgcttatcaatcaggatatgacctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaggcattctggacaaagacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcgagagatgtttcgaagtggtcgaaggacgccatgtcgttttggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-3b12蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.12所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggagttaggattaacaatcaggatatgggctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaggcattcggacgggtgacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacgccgcggtatattattgcgcggggttcgtcatgtgggcttgggaggtttggagtagtcatccgatgtggaagccgtacctgaggtattggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-4b9蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.13所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggagatagcattacctctgagaatatggcctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaaccattaaggcccataacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcgacacatattgctatgaaggggacttggaagaattggcatccccagtcgttgcactattggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca；编码所述的cd133-4b12蛋白的核苷酸序列如下（亦如seq id no.14所示）：atggcccaggtgcagctgttggagtctgggggaggcttggtacagcctggggggtccctgcgtctctcctgtgcagcctccggatatacgattagccctgaggctatgacctgggtccgccaggctccagggaagggtctagagtgggtatcaaccatttatatgcgagacggtagcacatactacgcagactccgtgaagggccggttcaccatctcccgtgacaattccaagaacacgctgtatctgcaaatgaacagcctgcgtgccgaggacaccgcggtatattattgcgcgagagttgggcgggggtggagtgggtggagttggaactccaacgtgaagtattggggtcagggaaccctggtcaccgtctcgagcgcggccgca。
12.可见，编码所述的cd133-2b1蛋白和cd133-2c10蛋白的核苷酸序列均由393个碱基组成，编码131个氨基酸；编码所述的cd133-2c4蛋白的核苷酸序列由384个碱基组成，编码128个氨基酸；编码所述的cd133-3b4蛋白的核苷酸序列由378个碱基组成，编码126个氨基酸；编码所述的cd133-3b12蛋白的核苷酸序列由405个碱基组成，编码135个氨基酸；编码所述的cd133-4b9蛋白的核苷酸序列由396个碱基组成，编码132个氨基酸；编码所述的cd133-4b12蛋白的核苷酸序列由390个碱基组成，编码130个氨基酸。
13.上述的靶向cd133的结合蛋白的制备方法，包括如下步骤：将编码所述的靶向cd133的结合蛋白的核苷酸序列克隆至表达载体中构建重组表达质粒，再将重组表达质粒转入宿主细胞进行蛋白表达、纯化，即可得到所述的靶向cd133的结合蛋白；或是通过蛋白合成的方法，得到所述的靶向cd133的结合蛋白。
14.上述的靶向cd133的结合蛋白在制备抗cd133

肿瘤的药物中的应用。
15.所述的肿瘤为前列腺癌或乳腺癌。
16.本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果：（1）本发明以噬菌体展示技术为基础，从人源蛋白噬菌体文库中筛选出7个与cd133胞外段结合的结合蛋白，仅通过原核系统就可进行蛋白表达，可大幅度简化生产工艺，降低蛋白生产成本，且本蛋白无需使用抗原免疫人体就可获得。
17.（2）本发明所提供的结合蛋白仅由一个重链可变区结构域组成，具有分子量小，组织渗透性强，结构稳定等优点。
18.（3）本发明所提供的结合蛋白应用于人体内不会产生免疫原性，可用于将来开发肿瘤蛋白药物。
19.（4）本发明所提供的结合蛋白经检测对前列腺癌及乳腺癌细胞具有显著的抑制作用，为后期开发肿瘤蛋白药物奠定了基础。
附图说明
20.图1为通过elisa检测7个纯化的结合蛋白与cd133胞外段结合的结果图；其中，bsa为空白对照，her2和egfr为无关抗原对照，cd133为相关抗原，以7个结合蛋白分别作为一抗，以hrp-protein a作为二抗，进行elisa检测；*p《0.05 ，相对于bsa对照组(n=3)。
21.图2为通过mtt方法检测结合蛋白对肿瘤细胞增殖能力影响的结果图；其中，使用7个蛋白（cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12）在不同的浓度（0、25、50、100 μg/ml）下培养肿瘤细胞du145、mcf-7，72h后每孔加入30
µ
l的mtt孵育4h，再加入200
µ
l的dmso使甲瓒充分溶解，之后用酶标仪检测od570吸光值；图中，a为对肿瘤细胞du145增殖能力影响的结果图，b为对肿瘤细胞mcf-7增殖能力影响的结果图；*p《0.05，相对于 0 μg/ml (n=3)。
22.图3为通过流式细胞分析仪和annexin v/pi双染试剂盒检测结合蛋白对肿瘤细胞凋亡影响的结果图；其中，7个蛋白（cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12）在50 μg/ml浓度下共同培养肿瘤细胞du145和mcf-7，同时设置一个pbs对照组；培养48 h后，利用annexin v/pi双染试剂盒和流式细胞分析仪检测细胞凋亡；图中，a为诱导肿瘤细胞du-145凋亡的结果，b为诱导肿瘤细胞mcf-7凋亡的结果；*p《0.05 ，相对于无结合蛋白对照组(n=3)。
23.图4为通过transwell侵袭方法检测结合蛋白对肿瘤细胞侵袭影响的结果图；其中，7个蛋白（cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12）在不同的浓度（0、25、50、100 μg/ml）下培养肿瘤细胞du145和mcf-7，再用含20%血清培养基诱导细胞侵袭24 h，之后用0.5%结晶紫对细胞染色并在显微镜下拍照，33%的乙酸将结合在细胞上的结晶紫洗脱，收集洗脱液，酶标仪检测od570吸光值；图中，a为蛋白对肿瘤细胞du-145，b为蛋白对肿瘤细胞mcf-7侵袭的影响；*p《0.05 ，相对于 0 μg/ml (n=3)。
具体实施方式
24.下面结合实施例及附图对本发明作详细描述，但本发明的实施方式不限于此。若未特别指出，实施例均按常规实验条件或者参照试剂盒制造厂商的说明书进行。除非特别说明，本发明所用试剂和材料均可通过市售获得。
25.实施例中使用到的试剂配制方法如下：（1）tye固体培养基：琼脂粉 15g、nacl 8g、蛋白胨 10g、酵母提取物 5g。
26.将试剂溶解于800ml去离子水中，定容至950ml，121℃高压蒸汽灭菌30min。待培养基冷却至60℃左右，每19ml培养基加入20
µ
l的100μg/ml氨苄青霉素和1ml 20%葡萄糖，混匀后倒板，4℃保存备用。
27.（2）2
×
ty液体培养基：nacl 5g、蛋白胨 16g、酵母提取物 10g。
28.将试剂溶解于去离子水，并定容至1 l，121℃高压蒸汽灭菌20min，室温长期保存。
29.（3）50
×
tae dna电泳缓冲液：tris-碱 242g、na2edta
•
2 h2o 37.2g、冰醋酸57.1ml。
30.将试剂，溶液溶解于800ml去离子水，再定容成1l，使用时稀释成1
×
tae电泳缓冲液，室温保存。
31.（4）pbs缓冲液（ph=7.4）：kh2po
4 0.24g、nacl 8g、kcl 0.2g、na2hpo4ꢀ•ꢀ
12h2o 9.07g。
32.将试剂溶解于800ml去离子水中，ph值调节至7.4，再定容成1l，121℃高压蒸汽灭菌20min，室温长期保存。在1l pbs缓冲液中加入1ml吐温-20，充分混匀后可配制成pbst溶液。
33.（5）peg溶液：nacl 73g、peg 6000 100g。
34.将试剂溶解于去离子水，并定容至500 ml，使用0.2 μm过滤器细菌后，4℃保存备用。
35.（6）lb液体培养基：nacl 2g、蛋白胨 2g、酵母提取物 1g。
36.将试剂溶解于去离子水，并定容至200 ml，121℃高压蒸汽灭菌20min，4℃保存备用。
37.（7）lb固体培养基：nacl 2g、蛋白胨 2g、yeast extract酵母提取物 1g、琼脂粉4g。
38.将试剂溶解于去离子水，定容至190ml，121℃高压蒸汽灭菌30min。待培养基冷却至约60℃，每19ml培养基加入20
µ
l的100μg/ml氨苄青霉素和1ml 20%葡萄糖，混匀后倒板，4℃保存备用。
39.（8）5
×
sds-page电泳缓冲液：甘氨酸 47g、tris碱 15.1g、sds 2.5g。
40.将试剂溶解于400 ml去离子水，之后定容成500 ml，使用时稀释成1
×
sds-page电泳缓冲液，室温长期保存。
41.（9）5
×
sds-page loading buffer：1m tris-hcl(ph 6.8) 1.25ml、甘油 2.5ml、溴酚蓝 25mg、sds 0.5g。
42.将试剂及溶液混匀，定容成5ml，分装成500
µ
l/份，使用前每小份加入25
µ
l β-巯基乙醇，室温长期保存。
43.（10）考马斯亮蓝r-250染色液：考马斯亮蓝r-250 1g、异丙醇 250ml、醋酸 100ml、ddh2o 650ml。
44.将试剂，溶剂混匀并充分溶解，室温长期保存备用。
45.（11）考马斯亮蓝染色脱色液：醋酸 100ml、乙醇 50ml、ddh2o 850ml。
46.将溶剂混匀，室温保存。
47.（12）破菌缓冲液：nacl 14.6g、tris碱 2.42g。
48.用1l水将上述试剂混匀并充分溶解，-4℃保存，使用时加入100
×
pmsf储液，pmsf储液的终浓度为1
×
pmsf储液。上样缓冲液：同破菌缓冲液；洗杂缓冲液：现配现用，量取9.9ml破菌缓冲液，加入100
µ
l 2m咪唑，充分混匀；洗脱缓冲液：现配现用，量取9ml破菌缓冲液，加入2m咪唑1ml，充分混匀。
49.（13）卡那霉素溶液（50mg/ml）：称取1 g卡那霉素粉末充分溶解于20 ml去离子水，混合液用0.2 μm的滤器过滤除菌，分装成每管1 ml，-20℃保存备用。
50.（14）氨苄青霉素溶液（100mg/ml）：称取1 g氨苄青霉素粉末充分溶解于10 ml去离子水，混合液用0.2 μm的滤器过滤除菌，分装成每管1 ml，-20℃保存备用。
51.（15）2%bsa-pbs缓冲液：称取1g牛血清白蛋白粉末充分溶解于50ml pbs缓冲液，混合液用0.2 μm的滤器过滤除菌，现配现用或-20℃长期保存。
52.（16）1mg/ml胰蛋白酶溶液：称取10mg胰蛋白酶粉末充分溶解于10 ml pbs缓冲液，-20℃长期保存。
53.（17）20%葡萄糖溶液：称取200 g葡萄糖粉末充分溶解于去离子水，并定容至1 l，混合液用0.2 μm滤器过滤除菌，-4℃保存备用。
54.（18）1 m 硫酸溶液：量筒量取9.8 ml浓硫酸，缓慢加入187 ml去离子水中，充分混匀，室温保存备用。
55.（19）10 %过硫酸铵（aps）：称取0.1 g过硫酸铵粉末溶解于1 ml去离子水中，分装成200
µ
l每管，-20℃保存。
56.（20）iptg溶液（500 mm）：称取iptg粉末11.915 g充分溶解于去离子水，定容至100 ml，混合液用0.2 μm滤器过滤除菌，分装成每管1 ml，-20℃长期保存。
57.（21）30%甘油溶液：量筒量取15 ml甘油加入35 ml去离子水中，充分混匀后用0.22 μm滤器过滤除菌，-4℃保存备用。
58.（22）100
×
pmsf储液：称取1.74 g pmsf粉末充分溶解于100 ml异丙醇，充分混匀，-20℃长期保存。
59.（23）2m 咪唑：称取1.14g 咪唑粉末充分溶解于10ml破菌缓冲液，-4℃保存备用。
[0060] 实施例1 制备辅助噬菌体
（1）在一个含有tye固体培养基的培养皿中，将从碧云天购买的tg1甘油菌以三区划线法涂布，之后将培养皿置于37℃恒温培养箱培养12～16小时；（2）挑取tye固体培养基上长出的tg1单菌落，接种于5ml的2
×
ty液体培养基，置于37℃恒温摇床，250 rpm培养12～16小时；（3）将步骤（2）中细菌培养液按1:100比例转接至另一管5ml的2
×
ty液体培养基，置于37℃恒温摇床，250rpm培养至菌液od
600
约为0.5；（4）用pbs将辅助噬菌体km13梯度稀释（从10
12
/ml ~104/ml）；（5）取200
µ
l步骤（3）中菌液，向其中加入10
µ
l稀释好的辅助噬菌体km13，混匀后置于37℃水浴锅水浴30分钟，得到混合物a；（6）取3ml已熔解的顶层琼脂培养基，铺到提前预热的含有tye固体培养基的培养皿上，室温静置使其凝固；具体操作步骤如下：使用之前，顶层琼脂先加热至完全熔解，然后在水中孵育冷却到42℃，再与步骤（5）得到的混合物a混合。室温静置至培养基完全凝固，将培养皿置于37℃恒温培养箱培养12～16小时；（7）用无菌吸头挑取步骤（6）中培养基上一个小的噬菌斑，接种于5ml步骤（3）中菌液（od
600
=0.5，按步骤（3）中方法制备），37℃恒温摇床，250 rpm条件下培养2～3个小时；（8）将步骤（7）得到的菌液按体积比1:100比例转接至另一含有500ml的2
×
ty液体培养基的锥形瓶中，37℃恒温摇床， 250rpm培养2~3个小时；（9）向步骤（8）得到的培养液中加入卡那霉素至终浓度50
µ
g/ml，30℃恒温摇床，250rpm培养12～16小时；（10）将步骤（9）培养好的培养液于12000g离心，取上清液过滤，再加入相当于上清液1/5体积的peg溶液（聚乙二醇），4℃静止数小时，纯化，获得辅助噬菌体；（11）检测制备的辅助噬菌体对胰酶的敏感性：在1ml 胰蛋白酶溶液中加入10
10
个辅助噬菌体km13，室温孵育30分钟。然后用pbs进行梯度稀释辅助噬菌体km13（从10
10
到102个噬菌体），分别取10
µ
l的km13梯度稀释物感染200
µ
l tg1细菌（od
600
=0.5，制备及侵染方法如前述），涂布于tye固体培养基上（包含终浓度50
µ
g/ml的卡那霉素），37℃恒温培养箱培养过夜。经胰酶处理的噬菌体侵染细菌后，获得的克隆数应该至少比未处理组的克隆数少106倍。否则丢弃该辅助噬菌体制备物，挑取另一个噬菌斑重新制备。
[0061] 实施例2 表达噬菌体结合蛋白文库（1）取适量人源结合蛋白噬菌体文库（source bioscience，human domain antibody library (dab)，london，uk）入500 ml 2
×
ty液体培养基（培养基额外含100
ꢀµ
g/ml氨苄青霉素，4 %（w/v）葡萄糖），37℃恒温摇床，250rpm培养至细菌od
600
=0.5；（2）加入实施例1制备得到的2
×
10
12 个辅助噬菌体到步骤（1）得到的菌液，混匀后置于37℃水浴30分钟。将这500 ml培养物分装成50 ml每管，3200 g离心10分钟，弃上清，将沉淀重悬，转接于含有500 ml 的2
×
ty液体培养基的锥形瓶中（培养基额外含0.1%（w/v）葡萄糖，100μg/ml 氨苄青霉素，50μg/ml卡那霉素）。置于25℃恒温摇床，250rpm震荡培养16～20小时。
[0062] 实施例3 纯化噬菌体结合蛋白文库（1）将实施例2中的过夜培养物分装成50 ml每管，室温3200 g离心20分钟；（2）取离心后上清液转入另一干净的50ml离心管，每管按体积比1:4的比例加入
20%peg溶液，冰上孵育1个小时；（3）将步骤（2）中离心管置于4℃、3200 g离心30分钟，弃上清，用5ml pbs重悬沉淀，再向其中加入1ml 20% peg溶液，冰上孵育10分钟；（4）将步骤（3）置于4℃、3200g离心30分钟，弃上清，再用1ml pbs重悬沉淀，然后4℃、3200g离心5分钟，上清用0.45μm滤器过滤除菌；（5）通过测量260nm处吸光值，估算噬菌体文库滴度：将上述纯化好的噬菌体文库用pbs稀释100倍，根据以下的经验公式估计噬菌体文库滴度（pfu/ml）：噬菌体/ml= od
260
×
100
×
22.14
×
10
10
。制备好的噬菌体文库可以在4℃保存2周，也可长期冻存于-80℃。
[0063] 实施例4 从噬菌体结合蛋白文库中筛选与cd133胞外段结合的蛋白（1）在上海波泰生物科技有限公司合成cd133胞外段蛋白（序列见genbank编号：np_006008.1），在nunc免疫管中加入4 ml用pbs缓冲液溶解、终浓度为100μg/ml的cd133胞外段蛋白稀释液，置于4℃过夜；（2）弃步骤（1）中过夜包被液，用pbs缓冲液轻柔冲洗免疫管内壁3次，然后加入4 ml 2% bsa-pbs封闭液，置于室温2小时；（3）弃步骤（2）中封闭液，再用pbs缓冲液轻柔冲洗免疫管内壁3次，加入4ml 2% bsa-pbs封闭液（其中包含5
×
10
12 个实施例3制备得到的噬菌体），置于室温1小时；（4）弃步骤（3）中封闭液，用pbst缓冲液轻柔冲洗免疫管内壁10次，再加入4ml的1mg/ml 的胰蛋白酶溶液，置于室温1小时，使噬菌体彻底从免疫管消化下来，得到消化液a；（5）从tg1菌株甘油储存物中挑取tg1菌液，按三区划线法划线于tye固体培养基上， 置于37℃恒温培养箱，培养14～16小时；（6）挑取步骤（5）中培养基上tg1单菌落接种于5ml 2
×
ty液体培养基，37℃恒温摇床，250rpm培养过夜；（7）将步骤（6）中菌液按体积比1：100比例接种至另一含有5ml 2
×
ty液体培养基的试管中，37℃恒温摇床，250rpm培养至菌液od
600
=0.5。
[0064]
（8）取步骤（7）得到的菌液加入步骤（4）制备的消化液a中，37℃ 恒温水浴1小时，然后3200g离心5分钟；（9）弃上清，沉淀用1ml 2
×
ty液体培养基重悬，得到重悬液a；取6个含有tye固体培养基的培养皿（含100
µ
g/ml氨苄青霉素，4%（w/v）的葡萄糖），每个板取166μl重悬液a进行涂布，涂好的培养皿置于37℃恒温培养箱培养过夜；（10）取步骤（9）培养过夜的培养皿，每块皿加入2ml 2
×
ty液体培养基，利用涂布棒将板上细菌刮下；（11）将刮下的菌液转入含有500ml 2
×
ty液体培养基的锥形瓶（培养基含4%（w/v）葡萄糖，100μg/ml氨苄青霉素），置于37℃恒温摇床，250rpm培养至菌液od600=0.5，再加入实施例1制备得到的辅助噬菌体km13，感染菌液，置于30℃恒温摇床，250rpm震荡培养过夜；（12）取步骤（11）得到的过夜培养物，加入peg溶液进行噬菌体纯化（参考前文步骤进行），再通过梯度稀释涂板来测定筛选所得的噬菌体文库滴度；（13）参考前面的方法（即重复步骤（1）～（12））进行后续4轮的噬菌体文库淘选，依次从上一轮得到的噬菌体中进行筛选。
[0065] 实施例5 从文库中挑取单克隆进行elisa验证
（1）完成5轮噬菌体文库淘选后，取一无菌96孔板（命名为a板），每孔加入200ml的2
×
ty液体培养基（培养基含100μg/ml氨苄青霉素，4%（w/v）葡萄糖），用无菌吸头从第5次筛选得到的过夜培养皿上挑取单克隆，接种至含有培养液的96孔板中，37℃恒温摇床，250rpm震荡培养过夜；（2）取另一无菌96孔板（命名为b板），每孔加入200μl的2
×
ty液体培养基（培养基含100μg/ml氨苄青霉素，4%（w/v）的葡萄糖），吸取5μl步骤（1）得到的过夜培养物，接种至96孔板，之后将板置于37℃恒温摇床，250rpm震荡培养3小时；在步骤（1）中a板剩余的过夜培养物每孔加入终浓度为20%甘油，制成甘油菌液储存物，长期冻存于-80℃；（3）将步骤（2）中b板培养3小时之后的板中的每孔培养物，分别转至无菌1.5ml ep管，管中有50μl包含4
×
10
8 个辅助噬菌体km13的2
×
ty液体培养基，轻柔混匀，将ep管置于37℃恒温孵育1小时；（4）孵育好之后，将1.5ml ep管3200g离心10分钟，弃上清；沉淀用200μl 2
×
ty液体培养基重悬（培养基含100μg/ml氨苄青霉素，50μg/ml卡那霉素，0.1%（w/v）葡萄糖），25℃恒温摇床，250rpm震荡培养过夜；（5）将步骤（4）得到的过夜培养物转至另一新的1.5ml ep管，3200g离心10分钟，取上清液再转移到另一个新的96孔板，置于冰箱4℃保存；（6）每孔加入100
µ
l含有0.2μg cd133胞外段蛋白的pbs缓冲液包被96孔elisa板，置于4℃过夜；（7）包被好的elisa板用pbs洗板3次，再向每孔加入250μl 2% bsa-pbs，室温封闭elisa板2小时，之后用pbs洗板3次备用；（8）吸取步骤（5）制备的上清液25μl至新的1.5ml ep管，再加入75μl 2% bsa-pbs中制备噬菌体稀释液，将噬菌体稀释液到步骤（7）中洗好的elisa板中，室温孵育1小时；（9）用pbst洗板5次，每孔加入100μl按体积比1:10000稀释的hrp标记抗m13偶联物（2% bsa-pbs稀释），室温孵育1个小时；（10）再次用pbst洗板5次，每孔加入100μl 四甲基联苯胺（tmb）溶液，待孔中液体变蓝，每孔加入50μl 1m浓硫酸终止反应，450nm处读取吸光值，并记录实验结果。
[0066] 实施例6 制备dh5α，bl21（de3）大肠杆菌感受态细胞（1）取少量大肠杆菌 dh5α和bl21（de3）菌液以三区划线法分别划线于含有lb固体培养基的培养皿上，之后将培养皿置于37℃恒温培养箱培养14～16小时；（2）分别从含有lb固体培养基的培养皿上挑取大肠杆菌dh5α、bl21（de3）单菌落，分别接种于含有5 ml lb液体培养基的试管中，37℃恒温摇床，220rpm震荡培养约12小时；（3）将两种细菌培养液按1:100的体积比分别接种至含有50 ml lb液体培养基的锥形瓶中，37℃恒温摇床，220rpm振荡培养2～3小时至菌液od 600
＝0.5左右；（4）将步骤（3）培养好的菌液分别转入另外2只无菌50 ml离心管，置于冰水混合液中静置10分钟；（5）将步骤（4）中的离心管置于冷冻离心机4℃，3000 g离心5分钟；（6）弃上清，取10 ml预冷的0.1 mol/l cacl
2 溶液轻柔重悬菌体沉淀，之后将离心管置于冰水混合液中静置30分钟；（7）离心管置于冷冻离心机4℃、3000 g离心5分钟；
（8）弃上清，取3 ml预冷的0.1 mol/l cacl
2 溶液轻柔重悬沉淀，得到重悬液b；（9）取3ml预冷的30%（v/v）的无菌甘油加入步骤（8）得到的重悬液b，轻柔混匀后，将混合液分装成每管100 μl，-80℃长期冻存。
[0067] 实施例7 将表达cd133结合蛋白的重组质粒转化至dh5α感受态细胞（一）构建cd133结合蛋白的重组质粒（1）将实施例5中的阳性单克隆按体积比1：1000比例接种转接到5ml的2
×
ty液体培养基（培养基含100μg/ml氨苄青霉素，4%（w/v）葡萄糖）培养过夜；（2）以cd133结合蛋白的正向及反向引物（正向引物：5
’‑
atggcccaggtgcagctgt-3’；反向引物：5
’‑
tctgcggccgcgctcgagac-3’），配制25μl的pcr扩增体系，将cd133结合蛋白的核苷酸序列扩增；其中：pcr反应体系为：模板（步骤（1）得到的过夜培养物） 1μl、引物（正向引物/反向引物） 各1μl、5
×
primerstar缓冲液 10μl、dntp混合物（每种2.5mm） 4μl、primerstardna聚合酶 0.5μl、无菌去离子水补足至25μl；pcr反应条件为：96℃ 10min；95℃ 10s； 60℃ 10s；72℃ 30s，30个循环；72℃ 5min；（3）将得到的cd133蛋白核苷酸序列pcr产物进行琼脂糖凝胶电泳，之后切取凝胶上的目的片段进行胶回收，胶回收产物保存于-20℃备用；（4）取适量cd133结合蛋白核苷酸序列胶回收产物，向其中加入限制性内切酶noti与noci进行酶切，酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳，之后切取凝胶上的目的片段进行胶回收，胶回收产物保存于-20℃备用（5）取适量表达载体pet28a，向其中加入限制性内切酶noti与noci进行酶切，酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳，之后切取凝胶上的目的片段进行胶回收，胶回收产物保存于-20℃备用（6）取适量cd133结合蛋白核苷酸序列酶切后胶回收产物，表达载体pet28a酶切后胶回收产物，加入连接酶，置于37℃连接过夜，得到连接产物；其中：连接反应体系为：pet28a双酶切产物 0.03pmol、目的片段双酶切产物 0.3pmol、酶连缓冲液 2.5μl、t4dna连接酶 1μl、无菌水补足至25μl。
[0068]
（二）将抗cd133重组质粒转化至dh5α感受态细胞（1）从-80℃冰箱中取出一管dh5α感受态细胞，冰上解冻；（2）取10μl连接产物加入100μl dh5α感受态细胞（实施例6制备得到），轻柔混匀，冰上静置30分钟；（3）将步骤（2）制备的混合物置于42℃恒温水浴锅中水浴90s，之后迅速转移至冰上静置冷却2～3分钟；（4）取900μl lb液体培养基加入步骤（3）制备的混合液，37℃恒温摇床，200rpm震荡培养1小时；（5）将培养好的混合液置于离心机，3000g离心1分钟收集混合液沉淀；（6）弃900μl上清，用剩下的100 μl培养液重悬菌体沉淀；（7）将混匀的菌悬液涂布于预先准备好的含有lb固体培养基的培养皿上（培养基含100 μg/ml氨苄青霉素，1%（w/v）葡萄糖）；
（8）培养皿置于37℃恒温培养箱培养12～16小时，（9）随机挑取培养皿上数个单克隆，分别接种至5ml lb液体培养基（培养基含100 μg/ml氨苄青霉素），37℃恒温摇床，220rpm震荡培养过夜。
[0069]
（10）以cd133结合蛋白的正向及反向引物（正向引物： 5
’‑
atggcccaggtgcagctgt-3’；反向引物：5
’‑
tctgcggccgcgctcgagac-3’），配制25μl的pcr扩增体系，向其中加入1μl步骤（9）得到的过夜培养物（模板），对单克隆进行菌液pcr验证；其中，pcr反应体系和反应条件参考步骤（一）。
[0070]
（11）pcr产物进行琼脂糖凝胶电泳，出现目的片段的则为阳性克隆。
[0071]
（12）对阳性克隆进行质粒抽提，即可得到cd133结合蛋白的重组质粒。
[0072]
（13）将得到的阳性克隆进行测序，结果显示，获得七个蛋白，命名为cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12蛋白，其编码核苷酸序列分别如seq id no.8、seq id no.9、seq id no.10、seq id no.11、seq id no.12、seq id no.13、seq id no.14所示。
[0073] 实施例8 结合蛋白的原核表达，蛋白纯化，sds-page凝胶电泳和考马斯亮蓝染色（一）结合蛋白原核表达（1）将实施例7制备得到的cd133结合蛋白的重组质粒转化至bl21感受态细胞（具体步骤参考实施例7）；（2）从步骤（1）转化后涂布的平板上挑取单菌落，接种至含有5 ml lb液体培养基的试管中（培养基含100 μg/ml氨苄青霉素，1%（w/v）葡萄糖），37℃恒温摇床，220rpm震荡培养12小时；（3）取步骤（2）培养好的菌液，按1：100体积比接种至含有100 ml lb液体培养基的锥形瓶中（培养基含100μg/ ml氨苄青霉素），37℃恒温摇床，220rpm震荡培养2～3小时；（4）待菌液od
600
为0.6～1.0，取1ml菌液用于制备未诱导大肠杆菌全蛋白样品，剩余菌液进行后续实验；（5）向步骤（4）剩余菌液内加入终浓度为0.25mm iptg，25℃恒温摇床，220rpm诱导表达6h；（6）取步骤（5）培养好的菌液1 ml用于制备诱导后的大肠杆菌全蛋白样品，剩余菌液置于4℃、5000g离心5min收集菌体沉淀；（7）弃上清，用20 ml预冷的破菌缓冲液重悬步骤（6）得到的菌体沉淀；（8）菌悬液转移至50ml烧杯，将烧杯置于冰盒中超声破碎菌悬液，超声粉碎机工作功率：40%，工作4秒，停8秒，破碎40分钟；（9）将破碎好的菌悬液转移到一干净的50ml离心管，4℃，15000g 离心40分钟；（10）收集步骤（9）离心后得到的上清，从中取20 μl上清用于制备菌体破碎后上清样品，再取部分沉淀用于制备菌体破碎后沉淀（沉淀用20 μl破菌缓冲液重悬），剩余上清转入另一个干净的50ml离心管中，4℃保存，等待过柱纯化。
[0074]
（二）结合蛋白过柱纯化（1）取一根ni-nta his
·
bind resin纯化柱，用10～15倍柱体积的上样缓冲液冲洗纯化柱；（2）将步骤（一）得到的上清液加入纯化柱，让上清液以自然流速流过纯化柱，期间
取20μl过柱液用于制备过柱液样品；（4）待上清液全部流过纯化柱，加入10倍柱体积的上样缓冲液冲洗纯化柱；（5）待步骤（4）中液体流尽，加入20倍柱体积的洗杂缓冲液洗净纯化柱上杂蛋白，期间取20μl洗杂液用于制备洗杂液样品；（6）待步骤（5）中液体流尽，加入5倍柱体积的洗脱缓冲液将目的蛋白从纯化柱上洗脱，期间用1.5 ml ep管收集洗脱液，每管收集洗脱液1 ml，共收集5管，再从每管洗脱液中分别取20 μl用于制备洗脱液1～5样品；（7）完成目的蛋白收集后，加入5倍柱体积的6m 尿素将纯化柱上剩余的蛋白洗脱，再加入30倍柱体积的蒸馏水清洗纯化柱；（8）待蒸馏水流尽，取5 ml 20%乙醇加入纯化柱，再封闭纯化管上下两端，将纯化柱长期保存于4℃。
[0075]
（三）sds-page凝胶电泳和考马斯亮蓝染色（1）按说明书配方 配制12%（w/v）的分离胶5ml，加入灌胶模具，使液面距离模具顶部2 cm左右，然后加入1.5ml无水乙醇，室温静置30 min待分离胶凝固；（2）将模具内无水乙醇除尽，按说明书配方配制5%（w/v）的浓缩胶2ml，加入到灌胶模具至顶部，插入模具配套梳子，室温静置30 min待浓缩胶凝固；（3）将配制好的胶板放入电泳槽内，加入适量电泳液，拔掉梳子，准备上样；（4）将上述结合蛋白表达纯化步骤中收集到的样品分别加入5
µ
l 5
×
sds-page蛋白上样缓冲液，混匀，置于100℃加热5～10 min；（5）取步骤（4）中制备好的样品5
µ
l加入sds-page凝胶梳孔，80v电压电泳，待样品跑过浓缩胶，将电压调至110 v，电泳至样品蓝色指示带跑至凝胶底部；（6）向染胶盒中加入适量考马斯亮蓝染色液，取出sds-page凝胶置于染胶盒，室温染色30 min；（7）弃染色液，使用清水洗净胶上染色液，再加入适量脱色液进行脱色；（8）待sds-page胶上目的条带清晰可见，凝胶脱色至透明状，白光下拍照记录。
[0076]
实验结果表明，获得纯化的cd133-2b1蛋白、cd133-2c4蛋白、cd133-2c10蛋白、cd133-3b4蛋白、cd133-3b12蛋白、cd133-4b9蛋白、cd133-4b12蛋白。
[0077] 实施例9 采用elisa检测纯化的cd133结合蛋白与抗原的结合（1）取一新的96孔免疫板，每孔分别加入100
ꢀµ
l终浓度为2
ꢀµ
g/ml（溶剂为pbs缓冲液）的抗原her2、egfr、抗原cd133胞外段蛋白稀释液（her2、egfr购于上海波泰生物科技有限公司），同时包被100
ꢀµ
l 2%bsa-pbs缓冲液作为空白对照，板置于37℃恒温培养箱静置2小时；（2）取出包被好的免疫板，pbs缓冲液洗板3次，除尽板内剩余液体，每孔加入250
µ
l 2% （w/v）bsa-pbs缓冲液，37℃恒温培养箱静置2小时；（3）取出封闭好的免疫板，pbs缓冲液洗板3次，除尽板内剩余液体，每孔加入100
µ
l 用pbs稀释了50倍的cd133结合蛋白-pbs混合液，将免疫板置于室温孵育1小时；结合蛋白分别为cd133-2b1蛋白、cd133-2c4蛋白、cd133-2c10蛋白、cd133-3b4蛋白、cd133-3b12蛋白、cd133-4b9蛋白和cd133-4b12蛋白；（4）取出免疫板，pbst缓冲液洗板3次，除尽板内剩余液体，将二抗hrp-protein a
用2% bsa-pbs缓冲液按1：5000比例进行稀释，免疫板每孔加入100
µ
l二抗稀释液，室温孵育1小时；（5）取出免疫板，pbst缓冲液洗板5次，除尽板内剩余液体，每孔加入100
µ
l tmb底物显色液，室温避光孵育10分钟，之后将免疫板置于酶标仪检测od 450 nm吸光值，记录实验数据。
[0078]
实验结果如图1所示，其中，bsa为空白对照，her2和egfr为无关抗原对照，可见，cd133-2b1蛋白、cd133-2c4蛋白、cd133-2c10蛋白、cd133-3b4蛋白、cd133-3b12蛋白、cd133-4b9蛋白和cd133-4b12蛋白均能与cd133胞外段特异性结合。
[0079] 实施例10 采用mtt方法检测纯化后的结合蛋白对肿瘤细胞增殖能力的影响（1）取一块96孔细胞培养板，每孔加入100
µ
l全培养基（含10%小牛血清的rpmi1640，下同），其中含有处于对数生长期的肿瘤细胞（人前列腺癌细胞du145或人乳腺癌细胞mcf-7）5000个，将培养板置于细胞培养箱37℃，5% co2培养过夜；（2）待细胞完全贴壁后，将孔内全培养基换成无血清培养基（rpmi1640，下同），培养板置于细胞培养箱饥饿处理4小时；（3）将步骤（2）饥饿处理后的无血清培养基吸除，每孔分别加入含有不同浓度蛋白（0、25、50和100 μg/ml）的100
µ
l 1%血清培养基，培养板置于细胞培养箱37℃，5% co2培养72小时；蛋白分别为cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12；（4）将处理好的培养板内液体吸除，每孔加入含有100
ꢀµ
l无血清培养基和20
µ
l mtt溶液的混合液，置于细胞培养箱37℃，5% co2孵育4小时；（5）吸除培养板内混合液，每孔加入200
µ
l dmso，之后将培养板置于摇床快速震荡10min使沉淀充分溶解；（6）将培养板置于酶标仪检测570nm处吸光值，记录检测结果。
[0080]
结果如图2所示，可见，cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12蛋白在50
µ
l/ml浓度时即可显著的抑制du145和mcf-7细胞增殖。
[0081] 实施例11 采用流式细胞分析仪检测结合蛋白诱导肿瘤细胞凋亡（1）取一块6孔细胞培养板，每孔加入1ml全培养基，其中含有处于对数生长期肿瘤细胞5
×
106个，将培养板置于细胞培养箱37℃，5% co2培养过夜；（2）待细胞完全贴壁后，将孔内全培养基换成无血清培养基，培养板置于细胞培养箱饥饿处理4小时；（3）将（2）中孔内培养基吸除，每孔加入无血清培养基1ml，其中含有50 μg/ml蛋白，培养板置于细胞培养箱37℃，5% co2培养48 小时；蛋白分别为cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12；（4）用胰酶将培养板内细胞消化，收集于1.5 ml ep管，细胞用pbs缓冲液清洗2次；（5）取出annexin v-fitc凋亡试剂盒中的4
×
结合缓冲液，用ddh2o其稀释成1
×
，取195 μl 1
×
结合缓冲液将细胞密度调整为5
×
10
6 个/ml；（6）取试剂盒中的annexin v-fitc 5 μl，加入步骤（5）制备的细胞混合液，室温避光孵育10～15 min；
（7）取200 μl 1
×
结合缓冲液加入到1.5ml ep 管中，加入步骤（6）制备的细胞混合液，轻柔混匀；（8）将步骤（7）中1.5 ml ep管置于离心机1000 g离心5 min，弃上清，取190 μl 1
×
结合缓冲液重悬细胞，再加入10 μl pi染色液，轻柔混匀。
[0082]
（9）流式细胞分析仪检测发生凋亡的肿瘤细胞，记录实验结果。
[0083]
结果如图3所示，cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12蛋白在50
µ
l/ml浓度时可显著地诱导du145细胞和mcf-7细胞凋亡。
[0084] 实施例12 transwell侵袭实验检测结合蛋白对肿瘤细胞侵袭能力的影响（1）将无菌transwell小室（8 μm孔径，24孔板）放入24孔细胞培养板，吸取50μl 基质胶（matrigel）加入小室内，将板置于细胞培养箱静置数小时，待matrigel完全凝固；（2）将处于对数生长期的肿瘤细胞用无血清培养基饥饿处理4小时，之后将肿瘤细胞消化并收集备用；（3）每个transwell小室的上室分别加入无血清培养基200
µ
l，其中含有5
×
10
4 个步骤（2）处理好的肿瘤细胞和不同浓度蛋白（0、25、50和100 μg/ml），下室加入500
µ
l 的含有20%（w/v）fbs的细胞培养基，将处理好的板置于细胞培养箱37℃，5% co2培养24 小时；蛋白分别为cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12；（4）取出培养好的培养板内小室，吸除小室内培养基，并用棉签轻轻擦除小室内matrigel上未侵袭的细胞；（5）向培养板内加入4%多聚甲醇固定小室内细胞10 min；（6）吸除固定液，向培养板内加入500 μl 0.5%结晶紫染液对细胞室温染色30 min；（7）将小室取出，用蒸馏水清洗3遍，再将小室正放置于载玻片上，显微镜下拍照记录；（8）将拍好照的小室放入另一干净24孔细胞培养板，向板中加入100μl 33%（w/v）乙酸溶液，将结合于细胞上的结晶紫洗脱下来，收集洗脱液，置于酶标仪检测570 nm处吸光值，并记录实验结果。
[0085]
结果如图4所示，cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12蛋白在25
µ
l/ml浓度时即可显著地抑制du145细胞侵袭；cd133-2b1、cd133-2c4、cd133-2c10、cd133-3b4、cd133-3b12、cd133-4b9、cd133-4b12蛋白在50
µ
l/ml浓度时即可显著的抑制mcf-7细胞侵袭。
[0086]
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。